Оценка влияния дополнительной обработки (лейкоредукция, патогенредукция, облучение) на статус активации концентрата тромбоцитов

ВВЕДЕНИЕ. Клиническая эффективность трансфузий и безопасность пациентов напрямую зависят от качества концентрата тромбоцитов (КТ). На клиническую эффективность трансфузии оказывают влияние факторы, связанные с характеристиками донора, а также с характеристиками полученного КТ. В статье приведены современные литературные и собственные данные изучения влияния дополнительной обработки на степень активации, метаболизм, агрегационную и прокоагулянтную активность аферезных концентратов тромбоцитов.

ЦЕЛЬ. Изучить влияние дополнительной обработки: лейкоредукции, облучения, патогенредукции на показатели активации тромбоцитов по динамике образования микрочастиц на сроках хранения.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Объектом исследования являлись концентраты тромбоцитов, заготовленные методом афереза согласно установленным требованиям. После заготовки каждый образец КТ оценивали по количеству образования тромбоцитарных микрочастиц и по метаболизму агрегационной и прокоагулянтной активности после 5 сут хранения. Показатели замеряли до и после процедуры дополнительной обработки КТ. Измерение размеров тромбоцитарных микрочастиц в образцах КТ выполняли методом проточной цитометрии.

РЕЗУЛЬТАТЫ. В результате проведенных исследований установлено, что дополнительная обработка концентратов тромбоцитов, например, лейкоредукция методом фильтрации и методом центрифугирования, а также облучение, не оказывают влияния на качество и функциональную способность КТ. Однако после патогенредукции уровень тромбоцитарных микрочастиц в концентрате тромбоцитов снижался пропорционально снижению количества тромбоцитов.

ОБСУЖДЕНИЕ. Проведен анализ содержания тромбоцитарных микрочастиц на сроках хранения, характеризующий динамику активации тромбоцитов. В результате проведенного исследования получены данные о сохранности регламентированных показателей безопасности и гемостатической активности тромбоцитов вне зависимости от дополнительной обработки. Использование полученных результатов позволяет дифференцировать компоненты с высоким и низким содержанием тромбоцитарных микрочастиц.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Количественное определение тромбоцитарных микрочастиц позволяет дифференцировать активированные компоненты (с высоким содержанием микрочастиц) и неактивированные (с низким содержанием микроча стиц), что следует учитывать при проведении трансфузионной терапии. Дальнейшее совершенствование технологий заготовки и хранения концентрата тромбоцитов будет способствовать улучшению качества и повышению эффективности трансфузионной терапии в медицинских организациях.

1. Burnouf T., Goubran H.A., Chou M. L., Devos D., Radosevic M. Platelet microparticles: detection and assessment of their paradoxical functional roles in disease and regenerative medicine. Blood Rev, 2014, 28(4), pp.155–166. doi: 10.1016/j.blre.2014.04.002.

2. Maurer–Spurej E., Larsen R., Labrie A., Heaton A., Chipperfield K. Microparticle content of platelet concentrates is predicted by donor microparticles and is altered by production methods and stress. Transfus Apher Sci, 2016, 55(1), pp. 35–43. doi: 10.1016/j.transci.2016.07.010.

3. Данильченко В. В., Чечеткин А.В., Григорьян М. Ш. и др. Применение методов афереза для заготовки компонентов донорской крови в службе крови Российской Федерации // Трансфузиология. 2017. № 1. С. 4–14.

4. Saas P., Angelot F., Bardiaux L., Seilles E., Garnache–Ottou F., Perruche S. Phosphatidylserine–expressing cell byproducts in transfusion: A pro–inflammatory or an anti-inflammatory effect? Transfus Clin Biol, 2012, 19(3), pp.90–97. doi: 10.1016/j.tracli.2012.02.002.

5. Хамитов Р. Г., Гаврилей А. В., Дрожжина И. Е. и др. Трудности внедрения пулированных тромбоцитов // Тромбоз, гемостаз и реология. 2022. № 4. С. 22–29. doi: 10.25555/THR.2022.4.1037.

6. Marini I., Rigoni F., Zlamal J., Pelzl L., Althaus K., Nowak–Harnau S., et al. Blood donor–derived buffy coat to produce platelets in vitro. Vox Sang, 2020, 115(1), pp. 94–102. doi: 10.1111/vox.12863.

7. Гапонова Т. В., Капранов Н. М., Тихомиров Д. С., Булгаков А. В., Одиноченко Ю. А., Шайдурова К. В. и др. Характеристика основных тенденций в работе службы крови Российской Федерации в 2016–2020 годах // Гематология и трансфузиология, 2022, Т. 67, №. 3, С. 388–397. doi: 10.35754/0234-5730-2022-67-3-388-397

8. Castrillo A., Jimenez–Marco T., Arroyo J. L., Jurado M. L., Larrea L., Maymo R. M., et al. Collection, storage, inspection and quality control of platelet concentrates obtained by apheresis: the situation in Spain. Transfus Apher Sci, 2017, 56(3), pp. 357–361. doi: 10.1016/j.transci.2017.02.002.

9. Bianchi M., Vaglio S., Pupella S., Marano G., Facco G., Liumbruno G. M., et al. Leucoreduction of blood components: an effective way to increase blood safety? Blood Transfus, 2016, 14(2), pp. 214–227. doi: 10.2450/2015.0154-15.

10. Napolitano M., Mancuso S., Raso S., LoCoco L., Arfò P. S., De Francisci G., et al. Buffy coat–derived platelets cryopre served using a new method: Results from a pivotal clinical trial on thrombocytopenic patients with acute leukaemia. Transfus Apher Sci, 2019, 58(6), pp. 102666. doi: 10.1016/j.transci.2019.10.008.

11. Sharma R. R., Marwaha N. Leukoreduced blood components: Advantages and strategies for its implementation in de veloping countries. Asian J Transfus Sci, 2010, 4(1), pp. 3–8. doi: 10.4103/0973-6247.59384.

12. Чечеткин А. В., Касьянов А. Д., Солдатенков В. Е., Макеев А. Б. Влияние инактивации патогенов на качество и по казатели биологической полноценности компонентов донорской крови // Мedline.ru. 2015. № 16. С. 779–790.

13. Рожков Е. В., Кожемяко О. В., Рожкова Н. С., Курманова О. В., Давидович М. А., Похабов Д. С., Мадзаев С. P. Хра нение патогенредуцированных тромбоцитов // Гематология и трансфузиология. 2023, 68(2), С.195–201. doi:10.35754/0234-5730-2022-68-2-195-201.

14. Manasa K., Vani R. Influence of Oxidative Stress on Stored Platelets. Adv Hematol, 2016, No. 2016, pp. 4091461. doi: 10.1155/2016/4091461.

15. Janetzko K., Hinz K., Marschner S., Goodrich R., Klüter H. Evaluation of Different Preparation Procedures of Patho gen Reduction Technology (Mirasol®)–Treated Platelets Collected by Plateletpheresis. Transfus Med Hemother, 2009, 36(5), pp. 309–315. doi: 10.1159/000230038.

16. Van der Meer P. F., Ypma P. F., van Geloven N., van Hilten J. A., van Wordragen-Vlaswinkel R. J., Eissen O., et al. He mostatic efficacy of pathogen–inactivated vs untreated platelets: a randomized controlled trial. Blood, 2018, 132(2), pp. 223–231. doi: 10.1182/blood-2018-02-831289.

17. Гришина Г. В., Касьянов А. Д., Бессмельцев С. С. Условия хранения концентрата тромбоцитов в учреждениях службы крови // Вестник гематологии. 2025. 21(3). С. 27–33.

18. Gao M., Zhang B., Zhang Y., Chen Y., Xiong J., Wang J., et al. The effects of apheresis, storage time, and leukofiltration on microparticle formation in apheresis platelet products. Transfusion, 2018, 58(10), pp. 2388–2394. doi: 10.1111/trf.14890.

19. van der Meer P. F., de Korte D. Platelet Additive Solutions: A Review of the Latest Developments and Their Clinical Implications. Transfus Med Hemother, 2018, 45(2), pp. 98–102. doi: 10.1159/000487513.

20. Гришина Г. В., Ласточкина Д. В., Касьянов А. Д., Голованова И. С., Бессмельцев С. С. Оценка микрочастиц в концентрате тромбоцитов в зависимости от патогенредукции: пилотное исследование // Морская медицина. 2025. Т.11, №1. С. 104–111 . doi: 10.22328/2413-5747-2025-11-1-104-111.

21. Похабов Д. С., Шестаков Е. А., Мадзаев С. Р., Романенкова А. С., Шалыгин Л. Д. и др. Валидация удаленной поста новки патогенредуцированных тромбоцитов // Тромбоз гемостаз и реология. 2025. № 1. С. 53–56.

22. McDonald C. P., Bearne J., Aplin K., Sawicka D. Assessing the inactivation capabilities of two commercially available platelet component pathogen inactivation systems: Effectiveness at end of shelf life. Vox Sang, 2021, 116(4), pp. 416–24. doi: 10.1111/vox.13040.