Гришина Галина Викторовна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник НИЛ гемотрансфузионных технологий
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Galina V. Grishina − Cand. of Sci. (Biol.), senior researcher at the Research Laboratory of Blood Transfusion Technologies
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Голованова Ирина Станиславовна − научный сотрудник НИЛ гемотрансфузионных технологий
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Irina S. Golovanova – Researcher, Research Laboratory of Blood Transfusion Technologies
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Ласточкина Дарья Вячеславовна − кандидат медицинских наук, научный сотрудник НИЛ гемотрансфузионных технологий
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Daria V. Lastochkina − Cand. of Sci. (Med.), Researcher, Research Laboratory of Blood Transfusion Technologies
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Касьянов Андрей Дмитриевич − кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник НИЛ гемотрансфузионных технологий
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Andrey D. Kasyanov − Cand. of Sci. (Med.), leading Researcher, Research Laboratory of Blood Transfusion Technologies
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Тарковская Лана Ростиславовна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник НИО патологии гемостаза
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Lana R. Tarkovskaya− Cand. of Sci. (Biol.), senior researcher at the Research Laboratory of Hemostasis Pathology
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Смирнова Ольга Анатольевна − кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник НИО патологии гемостаза
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Olga A. Smirnova − Cand. of Sci. (Med.), senior Researcher, Research Institute of Hemostasis Pathology
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
Бессмельцев Станислав Семенович – доктор медицинских наук, профессор, руководитель научных исследований
191024, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, д. 16
Stanislav S. Bessmeltsev − Dr. of Sci. (Med.), Professor, Honored Worker of the Russian Federation, Head of Scientific Research
191024, Saint Petersburg, 2nd Sovetskaya Str., 16
ВВЕДЕНИЕ. Клиническая эффективность трансфузий и безопасность пациентов напрямую зависят от качества концентрата тромбоцитов (КТ). На клиническую эффективность трансфузии оказывают влияние факторы, связанные с характеристиками донора, а также с характеристиками полученного КТ. В статье приведены современные литературные и собственные данные изучения влияния дополнительной обработки на степень активации, метаболизм, агрегационную и прокоагулянтную активность аферезных концентратов тромбоцитов.
ЦЕЛЬ. Изучить влияние дополнительной обработки: лейкоредукции, облучения, патогенредукции на показатели активации тромбоцитов по динамике образования микрочастиц на сроках хранения.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Объектом исследования являлись концентраты тромбоцитов, заготовленные методом афереза согласно установленным требованиям. После заготовки каждый образец КТ оценивали по количеству образования тромбоцитарных микрочастиц и по метаболизму агрегационной и прокоагулянтной активности после 5 сут хранения. Показатели замеряли до и после процедуры дополнительной обработки КТ. Измерение размеров тромбоцитарных микрочастиц в образцах КТ выполняли методом проточной цитометрии.
РЕЗУЛЬТАТЫ. В результате проведенных исследований установлено, что дополнительная обработка концентратов тромбоцитов, например, лейкоредукция методом фильтрации и методом центрифугирования, а также облучение, не оказывают влияния на качество и функциональную способность КТ. Однако после патогенредукции уровень тромбоцитарных микрочастиц в концентрате тромбоцитов снижался пропорционально снижению количества тромбоцитов.
ОБСУЖДЕНИЕ. Проведен анализ содержания тромбоцитарных микрочастиц на сроках хранения, характеризующий динамику активации тромбоцитов. В результате проведенного исследования получены данные о сохранности регламентированных показателей безопасности и гемостатической активности тромбоцитов вне зависимости от дополнительной обработки. Использование полученных результатов позволяет дифференцировать компоненты с высоким и низким содержанием тромбоцитарных микрочастиц.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Количественное определение тромбоцитарных микрочастиц позволяет дифференцировать активированные компоненты (с высоким содержанием микрочастиц) и неактивированные (с низким содержанием микроча стиц), что следует учитывать при проведении трансфузионной терапии. Дальнейшее совершенствование технологий заготовки и хранения концентрата тромбоцитов будет способствовать улучшению качества и повышению эффективности трансфузионной терапии в медицинских организациях.
INTRODUCTION. The clinical efficacy of transfusions and patient safety directly depend on the quality of the platelet concentrate (PC). Factors related to donor characteristics, as well as the characteristics of the resulting PC, influence the clinical efficacy of transfusion. This article presents current literature and our own data on the impact of additional processing on the degree of activation, metabolism, aggregation, and procoagulant activity of apheresis platelet concentrates.
OBJECTIVE. To study the effect of additional processing: leukoreduction, irradiation, pathogen reduction on platelet activation indices based on the dynamics of microparticle formation during storage periods.
MATERIALS AND METHODS. The study involved platelet concentrates prepared by apheresis in accordance with established requirements. After preparation, each PC sample was assessed for platelet microparticle formation and for the metabolism of aggregation and procoagulant activity after 5 days of storage. These parameters were measured before and after additional PC processing. Platelet microparticle size measurements in the PC samples were performed using flow cytometry.
RESULTS. The studies found that additional processing of platelet concentrates, such as leukoreduction by filtration and centrifugation, as well as irradiation, did not affect the quality and functionality of PC. However, after pathogen reduction, the level of platelet microparticles in the platelet concentrate decreased proportionally to the decrease in platelet count.
DISCUSSION. An analysis of platelet microparticle content during storage was conducted, characterizing platelet activation dynamics. The study yielded data on the maintenance of specified platelet safety parameters and hemostatic activity, regardless of additional processing. Using these results, it is possible to differentiate between components with high and low platelet microparticle content.
CONCLUSION. Quantitative determination of platelet microparticles allows differentiation between activated components (with a high microparticle content) and non-activated components (with a low microparticle content), which should be taken into account when conducting transfusion therapy. Further improvements in platelet concentrate preparation and storage technologies will contribute to improved quality and increased effectiveness of transfusion therapy in healthcare organizations.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.