Оценка микрочастиц в концентрате тромбоцитов в зависимости от патогенредукции: пилотное исследование

ВВЕДЕНИЕ. Статья посвящена данным, касающимся контроля безопасности концентрата тромбоцитов (КТ). В связи с возросшей потребностью применения данного компонента крови оценке его качества и безопасности уделяется повышенное внимание. ЦЕЛЬ. Оценить перспективный подход к оценке качества КТ для повышения эффективности и безопасности его трансфузий.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Объектом исследования являлись аферезные КТ. После заготовки каждый образец КТ исследовали на содержание микрочастиц. Измерение показателя проводили до и после процедуры патогенредукции КТ. Измерение размеров тромбоцитарных микрочастиц в образцах КТ выполняли методом динамического рассеяния света, основанном на определении коэффициента диффузии коллоидных частиц в жидкости на анализаторе размеров наночастиц Malvern Zetasizer Nano ZS.

РЕЗУЛЬТАТЫ. Выявлены возможности и преимущества рационального подхода к переливанию КТ с учетом степени активации тромбоцитов для оптимизации заготовки компонента. Особое внимание уделено методам оценки активации тромбоцитов в КТ. Переливание неактивированных тромбоцитов для применения у пациентов гематологического и онкологического профиля позволит снизить риск развития рефрактерности.

ОБСУЖДЕНИЕ. Обнаружение микрочастиц на основе ДРС позволит дифференцировать активированные (с высоким содержанием микрочастиц) от неактивированных (с низким содержанием микрочастиц) тромбоцитов при проведении лечебных трансфузий и оптимизировать использование этого дефицитного компонента крови.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Возможность дифференцировки КТ на основе скрининга содержания микрочастиц, образующихся в результате активации, будет способствовать повышению эффективности и безопасности трансфузионной терапии.

1. Rebulla P. A mini-review on platelet refractoriness. Haematologica, 2005, Vol. 90, No. 2, pp. 247–253. PMID: 15710579.

2. Slichter S. J., Davis K., Enright H., Braine H., Gernsheimer T., Kao K. J., et al. Factors affecting posttransfusion platelet increments, platelet refractoriness, and platelet transfusion intervals in thrombocytopenic patients. Blood, 2005, Vol. 105, No. 10, pp. 4106–4114. doi: 10.1182/blood-2003-08-2724.

3. Tetta С., Bruno S., Fonsato V., Deregibus MC, Camussi G. The role of microvesicles in tissue repair. Organogenesis, 2011, Vol. 7, No. 2, pp. 105–115. PMID: 21572253.

4. Piccin A., Murphy W. G., Smith O. P. Circulating microparticles: pathophysiology and clinical implications. Blood Rev, 2007, Vol. 21, No. 3, pp. 157–171. doi: 10.1016/j.blre.2006.09.001.

5. Tan K. T., Lip G. Y. The potential role of platelet microparticles in atherosclerosis. Thromb Haemost, 2005, Vol. 94, No. 3, pp. 488–492. doi: 10.1160/TH05-03-0201.

6. Momen-Heravi F., Balaj L., Alian S., Tigges J., Toxavidis V., Ericsson M., et al. Alternative methods for characterization of extracellular vesicles. Front Physiol, 2012, Vol. 3, P. 354. doi: 10.3389/fphys.2012.00354.

7. Lawrie A. S., Albanyan A., Cardigan R. A., Mackie I. J., Harrison P. Microparticle sizing by dynamic light scattering in fresh-frozen plasma. Vox Sang, 2009, Vol. 96, No. 3, pp. 206–212. doi: 10.1111/j.1423-0410.2008.01151.x

8. Xu Y., Nakane N., Maurer-Spurej E. Novel test for microparticles in platelet-rich plasma and platelet concentrates using dynamic light scattering. Transfusion, 2011, Vol. 51, No. 2, pp. 363–370. doi: 10.1111/j.1537-2995.2010.02819.x.

9. Cortés-Puch I., Remy K. E., Solomon S. B., Sun J., Wang D., Al-Hamad M., et al. In a canine pneumonia model of exchange transfusion, altering the age but not the volume of older red blood cells markedly alters outcome. Transfusion, 2015, Vol. 55, No. 11, pp. 2564–2575. doi: 10.1111/trf.13275.

10. Flegel W. A., Natanson C., Klein H. C. Does prolonged storage of red blood cells cause harm? British Journal of Haematology, 2014, Vol. 165, No. 1, pp. 3–16. doi: 10.1111/bjh.12747.

11. Johnson L., Reade M. C., Hyland R. A., Tan S., Marks D. C. In vitro comparison of cryopreserved and liquid platelets:potential clinical implications. Hyland Transfusion, 2015, Vol. 55, No. 4, pp. 838–847. doi: 10.1111/trf.12915.

12. Johnson L., Tan S., Wood B., Davis A., Marks D. C. Refrigeration and cryopreservation of platelets differentially affect platelet metabolism and function: a comparison with conventional platelet storage conditions. Transfusion, 2016, Vol. 56, No. 7, pp. 1807–1818. doi: 10.1111/trf.13630.

13. Reddoch K. M., Pidcoke H. F., Montgomery R. K., Fedyk C. G., Aden J. K., Ramasubramanian A. K., et al. Hemostatic function of apheresis platelets stored at 4 °С and 22 °С. Shock. 2014, Vol. 41, Suppl 1, pp. 54–61. doi: 10.1097/SHK.0000000000000082.

14. Millar D., Murphy L., Labrie A., et al. Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions. J. Vis. Exp, 2018, Vol. 131, e56893. doi:10.3791/56893.

15. Maurer-Spurej E., Larsen R., Labrie A., et al. Microparticle content of platelet concentrates is predicted by donor microparticles and is altered by production methods and stress. Transfusion and Apheresis Science, 2016, Vol. 55, No. 1, pp. 35–43.